近年来，重金属污染土壤的问题对环境产生的威胁越来越大，其污染面积和程度呈上升趋势，给我国农业生产安全和人民健康带来了严重的风险和危害^[1]。镉是我国农田土壤污染较为严重且普遍的主要重金属元素，因其不能在生物体内降解而成为一种极具毒性的重金属元素^[2]。葡萄是世界上重要的栽培果树之一，也是最古老、最早栽培的果树之一，其果实营养丰富，味道鲜美，深受人们喜爱。 土壤中镉含量过多将会影响葡萄的生长，已有研究表明，我国部分地区葡萄园土壤中的镉含量已超过绿色食品产地土壤环境质量标准或镉污染已达到轻度污染等级，对葡萄果品安全造成严重危害^[3-5]。 因此，研究葡萄园土壤的镉污染修复，保证葡萄果品的安全、绿色和可持续生产十分重要。在农业生产上，间作套种或混作可通过根系和地上结构的互利互补促进作物对养分、水、光等资源的利用，使产量增加^[6]。前人研究表明^[7-8]，白三叶混种德国鸢尾能够用于铅污染土壤的修复，白车轴草混种紫花地丁能较好修复镉污染。在土壤镉污染条件下， 鬼针草属植物与葡萄幼苗混种可降低葡萄幼苗的镉含量^[9]。

嫁接繁殖是广泛应用于生产上的果树、蔬菜等经济作物的繁育方法。有研究结果表明，嫁接导致的生物胁迫可以通过诱导植物的生理变异来提高植物的抗性^[10]，嫁接还可以引起植物DNA甲基化， 并将这种变异遗传给后代^[11]。自根苗嫁接可促进硫华菊及凤仙花后代的生长^[12]。在镉污染条件下， 嫁接可以提高少花龙葵和荠菜后代的生物量^[13-14]， 提高镉超富集植物少花龙葵地上部镉积累量和镉富集植物荠菜后代植株的镉积累量^[15]，说明嫁接可以提高镉超富集或镉富集植物后代的重金属积累能力。凤仙花是一种镉富集型花卉植物，对镉污染土壤的修复能力较弱^[16]。研究表明，采用自根苗嫁接能够促进镉污染条件下凤仙花后代的生长，提高其对镉的吸收与积累，从而提高了其对镉污染土壤的修复能力^[17]。因凤仙花嫁接后代对镉的吸收有明显的促进作用，因此，本研究通过将凤仙花进行未嫁接、同株嫁接、异株同苗嫁接、异株异苗嫁接处理，用不同处理的凤仙花嫁接后代与葡萄幼苗进行混种，旨在探究凤仙花嫁接后代与葡萄混种对葡萄幼苗生长和镉积累的影响，以期筛选出能显著降低葡萄幼苗镉含量的凤仙花嫁接后代，为葡萄园镉污染修复提供参考。

1 材料与方法

1.1 供试材料与土壤

供试凤仙花种子采自四川农业大学成都校区（东经103°50′，北纬30°42′）周围农田；供试葡萄为‘夏黑’的扦插苗，来自四川农业大学崇州基地。供试土壤取自四川农业大学成都校区周边农田，其基本理化特性为：pH值7.06，全氮1.48 g/kg，全磷0.78 g/kg，全钾17.82 g/kg，碱解氮94.65 mg/kg，有效磷6.28 mg/kg，速效钾149.52 mg/kg， 其中供试土壤背景有效镉含量未检出。

1.2 试验方法

1.2.1 凤仙花嫁接处理

2017 年4 月将取自同一株凤仙花的种子进行播种和育苗，待植株长到一定高度时进行嫁接处理^[17]。 嫁接处理方式如下：1）不嫁接处理（CK）。凤仙花幼苗移栽种植，收集种子保存。2）同株嫁接（SG）。选用一株约10 cm高的凤仙花，以苗上部（约4 cm）作接穗，苗下部茎段（约6 cm）作砧木进行嫁接，并保留砧木叶片。3）异株同苗嫁接（UG）。选用2 株株高约10 cm的凤仙花，将一株取苗上部（约4 cm）作接穗，另一株苗下部茎段（约6 cm）作砧木进行嫁接，并保留砧木叶片。 4）异株异苗嫁接（DG）。选用2 株株高分别约5 和10 cm的凤仙花，将株高10 cm的凤仙花下部茎段（约6 cm）作砧木，株高5 cm的凤仙花取上部苗（约4 cm）作接穗进行嫁接。

均采用劈接法嫁接。用宽约1 cm、长20 cm的塑料带进行绑缚，使砧木与接穗的结合部分牢牢地贴在一起，并种植在营养土中。嫁接成活后，将凤仙花全部移植到无重金属污染的湿润土壤中。待凤仙花开花时，采用硫酸纸袋进行套袋隔离。种子成熟后，分别收集种子保存待用。

1.2.2 试验设计

2018 年2 月，将风干后的供试土壤过5 mm筛，用15 cm×18 cm（直径 × 高）塑料盆每盆装入3.0 kg，以CdCl₂·2.5H₂O分析纯形式加入重金属镉并混匀，使土壤镉浓度为5 mg/kg。保持土壤湿润，保持土壤田间持水量的80%，自然放置平衡4 周，不定期翻土混合，保证土壤充分混合均匀。 2018 年4 月，将不同嫁接处理的凤仙花后代种子进行分别育苗。2018 年5 月挑选生长基本一致的 ‘夏黑’葡萄当年扦插幼苗（新梢长约10 cm）及凤仙花嫁接后代（2 对真叶展开）栽入塑料盆中，葡萄单种每盆3 株，葡萄与凤仙花嫁接后代混种为每盆葡萄2 株，凤仙花嫁接后代2 株，每个处理重复3 次。盆与盆之间的距离为15 cm，完全随机摆放。 保证其在自然状况下生长，根据盆中土壤缺水情况，不定期浇水（水中未检出镉），使土壤保持湿润。为防止污染物淋溶渗漏损失，在盆下放置塑料托盘并将渗漏液倒回盆中。在整个生长过程中不定期的交换盆与盆的位置以减弱边际效应的影响，并及时去除杂草，防治病虫害。

1.3 项目测定

2018 年6 月，采集葡萄幼苗其从上往下的第3 或第4 片功能叶，测定叶片的光合色素（叶绿素a、 叶绿素b和类胡萝卜素）含量及抗氧化酶（SOD、 CAT）活性。光合色素含量采用紫外分光光度法进行测定^[18]，SOD活性采用氮蓝四唑法进行测定^[18]， CAT活性采用高锰酸钾滴定法进行测定^[18]。之后将葡萄和凤仙花嫁接后代整株收获，土壤分开存放。将葡萄植株分成根、茎、叶3 部分，将凤仙花嫁接后代植株分为根系和地上部两部分，分别用自来水洗净，再用去离子水冲洗3 次后，于110℃ 杀青15 min，80℃烘干至恒重，称重，然后粉碎， 过0.149 mm筛，植物样品由硝酸和高氯酸（体积比为4∶1）消化后用iCAP 6300 型ICP光谱仪（Thermo Scientific，USA）测定镉含量^[19]。土壤自然风干后过1 mm筛，土壤pH值采用土水比1∶2.5 进行测定。土壤有效态镉含量由DTPA-TEA提取并ICP-MS分析测定^[20]。 转运系数=地上部镉含量/根系镉含量^[21]。

1.4 数据分析

采用SPSS 22.0 统计软件对试验数据进行分析， 采用Duncan新复极差法进行多重比较，分析差异显著性。

2 结果与分析

2.1 混种凤仙花嫁接后代对葡萄幼苗生物量的影响

由表1 可知，混种异株异苗株凤仙花嫁接后代与混种凤仙花未嫁接后代和葡萄单种相比，均显著提高了葡萄幼苗根系和地上部分的生物量。葡萄幼苗根系的生物量按照由大到小的顺序排列依次为单种< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代< 混种凤仙花未嫁接后代< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代。葡萄幼苗地上部分的生物量按照由大到小的顺序排列依次为混种凤仙花未嫁接后代< 单种< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代< 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代。与葡萄单种相比，混种异株异苗株凤仙花嫁接后代葡萄幼苗根系和地上部分的生物量分别增加了47.25%和23.16%。另外，混种凤仙花异株异苗株嫁接后代葡萄幼苗的根冠比也最高。

注：同列不同小写字母表示差异显著（P<0.05），下同。

2.2 混种凤仙花嫁接后代对葡萄幼苗光合色素的影响

由表2 可知，在镉胁迫条件下，混种凤仙花嫁接后代与葡萄单种相比，不同程度地增加了葡萄幼苗的光合色素。混种凤仙花异株异苗株嫁接后代的葡萄幼苗叶片叶绿素a含量、叶绿素b含量和类胡萝卜素含量均显著高于葡萄单种。与凤仙花嫁接后代混种的葡萄幼苗叶片叶绿素总量由大到小的顺序排列依次为单种< 混种凤仙花未嫁接后代< 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代；类胡萝卜素含量由大到小的顺序排列依次为单种< 混种凤仙花未嫁接后代< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代< 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代。混种异株异苗株凤仙花嫁接后代葡萄幼苗的叶绿素a含量、叶绿素b含量和类胡萝卜素含量与葡萄单种相比分别增加了20.48%、26.68%和14.12%。

2.3 混种凤仙花嫁接后代对葡萄幼苗抗氧化酶活性、可溶性糖和可溶性蛋白的影响

在土壤镉胁迫条件下，混种凤仙花嫁接后代可显著提高葡萄幼苗抗氧化酶（SOD、CAT）活性。由表3 可知，混种凤仙花嫁接后代葡萄幼苗的SOD和CAT活性均显著高于葡萄单种。葡萄幼苗的SOD和CAT活性表现为单种< 混种凤仙花未嫁接后代< 混种凤仙花同株嫁接后代< 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代< 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代。葡萄幼苗的SOD活性较葡萄单种分别提高了11.31%、17.51%、28.15%和32.35%；CAT活性较葡萄单种分别提高了10.05%、25.98%、26.85%和38.16%。

混种凤仙花嫁接后代葡萄幼苗可溶性糖含量与葡萄单种相比均显著增加，其中混种凤仙花异株异苗株嫁接后代葡萄幼苗的可溶性糖含量最高，较葡萄单种增加了44.14%。混种凤仙花同株嫁接后代和混种凤仙花异株异苗株嫁接后代葡萄幼苗可溶性蛋白含量与葡萄单种相比均显著增加，较葡萄单种分别增加了29.90%和31.48%。

2.4 混种凤仙花嫁接后代对葡萄幼苗镉含量的影响

由表4 可知，与凤仙花嫁接后代混种的葡萄幼苗根系和地上部分的镉含量均显著低于葡萄单种。葡萄幼苗的根系和地上部分的镉含量均表现为单种> 混种凤仙花未嫁接后代> 混种凤仙花同株嫁接后代> 混种凤仙花异株同苗株嫁接后代> 混种凤仙花异株异苗株嫁接后代。按镉含量由高到低，混种凤仙花嫁接后代葡萄幼苗根系的镉含量与葡萄单种相比分别降低了15.18%、17.13%、56.67%和83.53%。混种凤仙花异株异苗株嫁接后代的葡萄幼苗地上部分的镉含量最低。就转运系数而言，混种凤仙花嫁接后代均降低了葡萄幼苗的转运系数，其中混种凤仙花异株异苗株嫁接后代葡萄幼苗的转运系数最低。

2.5 与葡萄混种的凤仙花嫁接后代生物量及镉积累

由表5 可知，在土壤镉胁迫条件下，混种葡萄幼苗会不同程度地影响凤仙花嫁接后代的生物量、镉含量和镉积累量。与葡萄混种的凤仙花嫁接后代根系和地上部分的生物量均显著大于未嫁接后代，同株嫁接后代和异株同苗株嫁接后代根系和地上部分的镉含量显著低于未嫁接后代。就镉积累量而言，与葡萄混种的凤仙花嫁接后代根系和地上部分的镉积累量均显著大于未嫁接后代，其中异株异苗株嫁接后代根系和地上部分的镉积累量达到最大值，分别为30.31 和171.10 μg，较未嫁接后代分别增加46.45%和44.06%。

2.6 混种后土壤pH值及有效态镉含量

由图1 可知，在镉胁迫条件下，葡萄幼苗混种凤仙花嫁接后代土壤中的pH值较葡萄单种显著增加，具体表现为单种< 未嫁接后代< 同株嫁接后代< 异株同苗株嫁接后代< 异株异苗株嫁接后代。由图2 可知，葡萄幼苗混种凤仙花嫁接后代土壤中的有效态镉含量较葡萄单种显著降低，具体表现为单种> 未嫁接后代> 同株嫁接后代> 异株同苗株嫁接后代> 异株异苗株嫁接后代。

3 讨论

植物间混种可通过根际对话影响植物的生长， 在重金属污染条件下，植物分泌的低分子量有机酸通过形成可溶性络合物而增加重金属元素在根际土壤的移动性^[22]。另外根系分泌物可改变重金属的生物有效性和毒性，并在植物吸收重金属的过程中发挥重要作用^[23]。混种还可以通过增强植物与植物、植物与环境间的相互作用来提高植物对外界胁迫的抗逆性，从而提高农产品的品质与产量^[24-25]。 孙国超等^[26]研究发现树番茄幼苗混种繁缕可有效降低镉污染土壤上树番茄幼苗的镉积累，同时达到修复镉污染土壤的效果。练华山等^[27]研究表明混种牛膝菊嫁接后代能够促进树番茄幼苗的生长，并降低树番茄的镉含量。本研究结果与上述结果相似，研究发现凤仙花嫁接后代和葡萄幼苗混种能够提高葡萄幼苗生物量，显著降低葡萄幼苗根及地上部分的镉含量。

光合作用是植物最重要的生理反应之一，其光合色素含量水平高低直接反映了光合能力的强弱。 本研究结果发现在土壤镉胁迫条件下，混种凤仙花嫁接后代与葡萄单种相比，不同程度地增加了葡萄幼苗的光合色素。混种凤仙花异株异苗株嫁接后代的葡萄幼苗叶片叶绿素a含量、叶绿素b含量和类胡萝卜素含量均显著高于葡萄单种，这和前人研究结果一致^[28]。

Michael等^[29]认为植物细胞中可溶性蛋白可与重金属离子结合形成金属结合蛋白，从而降低植物细胞中游离态重金属离子的含量，以减轻重金属离子对植物细胞的伤害；糖是参与调节渗透胁迫的小分子物质，在植物对重金属的适应性调节中，是增加渗透性溶质的重要组成部分。韩淑梅等^[30]研究表明在土壤镉胁迫条件下，植物通过一系列生理生化反应形成了一定耐性机制，通过增加脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白为镉耐性相关蛋白的合成提供物质基础，增强了植物耐受重金属的能力。植物还可通过提高体内抗氧化酶的活性，及时清除过量的活性氧自由基，减缓镉胁迫的毒害作用^[31]。本试验研究结果表明，葡萄幼苗混种凤仙花嫁接后代提高了抗氧化酶活性、可溶性蛋白及可溶性糖含量， 这与前人的研究结果一致^[9]。

研究表明，重金属胁迫会促进植物根系分泌物的释放，可通过改变根际pH值等理化性质间接地影响重金属在土壤中的有效性^[32]，土壤pH值是决定重金属形态及分布的直接因素^[33]。本试验研究发现凤仙花嫁接后代和葡萄幼苗混种显著增加了土壤pH值，并降低了土壤的有效态镉含量。这可能是凤仙花嫁接后代和葡萄幼苗混种产生了根际对话，改变了根际土壤环境，提高了土壤养分有效性，从而促进了凤仙花嫁接后代对重金属镉的吸收。

4 结论

在镉胁迫条件下，葡萄幼苗混种凤仙花嫁接后代可提高葡萄幼苗生物量、光合色素含量、抗氧化酶活性、可溶性蛋白及可溶性糖含量，并显著降低葡萄幼苗根及地上部分的镉含量，增加土壤pH值， 降低土壤的有效态镉含量。其中，葡萄幼苗与凤仙花异株异苗株嫁接后代混种效果最佳，使葡萄幼苗的生物量及凤仙花嫁接后代的镉积累量均达到最大值，且葡萄幼苗地上部分的镉含量显著低于其他处理。因此，本研究的凤仙花嫁接后代均可应用于葡萄园镉污染土壤的修复，且最佳材料是凤仙花异株异苗株嫁接后代。

参考文献