en
×

分享给微信好友或者朋友圈

使用微信“扫一扫”功能。
作者简介:

朱芙蓉(1993-),硕士研究生,从事药用植物栽培与环境调控研究,E-mail:837968133@qq.com。

通讯作者:

杜慧慧,E-mail:duhuihui2010@163.com。

周浓,E-mail:erhaizn@126.com。

参考文献 1
李金龙,熊俊芬,张海涛,等.氮、磷、钾对滇重楼产量及皂苷含量的影响[J].云南农业大学学报(自然科学版),2016,31(5):895-901.
参考文献 2
杨永红,戴丽君,何昆鸿,等.土壤营养与人工栽培滇重楼品质相关性评价[J].中药材,2012,35(10):1557-1561.
参考文献 3
Khan M S,Zaidi A,Wani P A.Role of phosphate solubilizing microorganisms in sustainable agriculture:a review[J]. Agronomy for Sustainable Development,2007,27(1):29-43.
参考文献 4
Weber O,Delince J,Duan Y.Trade and finance as crosscutting issues in the global phosphate and fertilizer market[M]. Berlin:Springer,2014.275-299.
参考文献 5
Ziadi N,Whalen J K,Messiga A J,et al.Assessment and modeling of soil available phosphorus in sustainable cropping systems[J].Agronomy,2013,122:85-126.
参考文献 6
滕泽栋,李敏,朱静,等.解磷微生物对土壤磷资源利用影响的研究进展[J].土壤通报,2017,48(1):229-235.
参考文献 7
魏自民,王世平,席北斗,等.富磷垃圾肥对大豆营养及产量、品质的影响[J].植物营养与肥料学报,2006,12(2):282-284.
参考文献 8
庄馥璐,柴小粉,高蓓蓓,等.苹果根际解磷菌的分离筛选及解磷能力[J].中国农业大学学报,2020,25(7):69-79.
参考文献 9
秦利均,杨永柱,杨星勇.土壤溶磷微生物溶磷、解磷机制研究进展[J].生命科学研究,2019,23(1):59-64.
参考文献 10
朱德旋,杜春梅,董锡文,等.一株寒地高效解无机磷细菌的分离鉴定及拮抗作用[J].微生物学报,2020,60(8):1672-1682.
参考文献 11
刘文干,曹慧,樊建波,等.一株红壤花生根际溶磷真菌的分离、鉴定及溶磷能力的研究[J].土壤学报,2012,49(5):988-995.
参考文献 12
邵锴,邱业先,徐婧.高效溶磷菌的筛选、鉴定及其溶磷特性[J].江苏农业科学,2017,45(8):253-257.
参考文献 13
王光华,周克琴,金剑,等.不同碳源对三种溶磷真菌溶解磷矿粉能力的影响[J].生态学杂志,2004(2):32-36.
参考文献 14
东秀珠,蔡妙.常见细菌系统鉴定手册[M].北京:科学出版社,2001.374-390.
参考文献 15
Konda S G,Sobanbabu K G,Sabarinathan V K,et al.Evaluation of phyllosphere antagonistic bacteria on the management of Fusarium ear rot of maize caused by Fusarium verticillioides[J]. Journal of Biological Control,2018,32(4):257-263.
参考文献 16
Liu Z G,Li Y C,Zhang S A,et al.Characterization of phosphatesolubilizing bacteria isolated from calcareous soils[J].Applied Soil Ecology,2015,96:217-224.
参考文献 17
李海云,姚拓,张榕,等.红三叶根际溶磷菌株分泌有机酸与溶磷能力的相关性研究[J].草业学报,2018,27(12):113-121.
参考文献 18
张英,芦光新,谢永丽,等.溶磷菌分泌有机酸与溶磷能力相关性研究[J].草地学报,2015,23(5):1033-1038.
参考文献 19
詹寿发,卢丹妮,毛花英,等.2 株溶磷、解钾与产IAA的内生真菌菌株的筛选、鉴定及促生作用研究[J].中国土壤与肥料,2017(3):142-151.
参考文献 20
Chen G C,He Z L,Wang Y J.Impact of pH on microbial biomass carbon and microbial biomass phosphorus in red soils [J].Pedosphere,2004,14(1):9-15.
参考文献 21
宫安东,朱梓钰,路亚南,等.吡咯伯克霍尔德菌 WY6-5 的溶磷、抑菌与促玉米生长作用研究[J].中国农业科学,2019,52(9):1574-1586.
参考文献 22
孟祥坤,于新,朱超,等.解磷微生物研究与应用进展 [J].华北农学报,2018,33(S1):208-214.
参考文献 23
Vazquez P,Holguin G,Puente M.E,et al.Phosphatesolubilizing microorganisms associated with the rhizosphere of mangroves in a semiarid coastal lagoon[J].Biology & Fertility of Soils,2000,30(5-6):460-468.
目录contents

    摘要

    研究筛选滇重楼根际土壤解磷菌,提高滇重楼产量和品质,为其微生物菌肥的研发提供优良菌株。采集四川、云南、贵州中 10 个不同地区野生品和移栽品滇重楼根际土壤分离筛选高效解无机磷菌,通过钼锑钪比色法进行溶磷能力测定,结合生理生化和 16S rDNA 进行鉴定分析。结果表明,共分离纯化 42 株溶磷菌,发酵液中有效磷的含量为 66.68 ~ 104.10 mg/L,其中属于芽孢杆菌属 Z3-4 菌株解无机磷能力最强,发酵上清液中有效磷的含量为 104.10 mg/L、增磷量为 38.55 mg/L、解磷率为 37.03%。菌株 Z3-4 是一株具有高效解无机磷作用的细菌,可应用于生物菌肥的生产。

    Abstract

    The P-dissolving bacteria in rhizosphere soil of Paris polyphylla var. yunnanensis was screened in order to improve the yield and quality of Paris polyphylla var. yunnanensis,and provide excellent strains for the development of microbial fertilizer. The rhizosphere soils of wild and transplanted Paris polyphylla var. yunnanensis in 10 different regions of Sichuan,Yunnan and Guizhou were collected and screened to isolate and screen high-efficiency inorganic P-dissolving bacteria. The P-dissolving capacity was determined by the molybdenum-antimony-scandium colorimetric method,combined with physiological,biochemical and 16S rDNA identification analysis. The results showed that a total of 42 strains of phosphate solubilizing bacteria were isolated and purified. The available phosphorus content in the fermentation broth was 66.68 ~ 104.10 mg/L. Among them,the Z3-4 strain belonging to the genus Bacillus had the strongest ability to solubilize inorganic phosphorus,and was excellent in fermentation. The content of available phosphorus in the clear liquid was 104.10 mg/L,the amount of phosphorus increased was 38.55 mg/L,and the phosphorus solution rate was 37.03%. It can be concluded that strain Z3-4 is a bacterium with high efficiency of dissolving inorganic phosphorus and can be used in the production of biological fertilizer.

  • 具有清热解毒、抗癌抑菌等功效的药用植物滇重楼(Paris polyphylla var.yunnanensis)是自然繁殖率低、生长缓慢的多年生草本植物,人类的肆意采挖致使其野生资源匮乏,已严重威胁医药产业的可持续发展[1]。高效引种栽培可缓解供不应求的现状,但科学合理施肥是提升滇重楼产量和品质的关键[2]。磷元素作为植物生长的必需元素之一[3],在土壤中的含量较高,但大多以难溶性物质存在,不能直接被植物吸收利用,故常增施磷肥来满足植株对磷元素的需求[4]。由于土壤的理化性质和磷酸盐的化学行为,磷肥的利用率只有10%~25%,大量磷元素以无效态形式存在,减少了磷的有效性[5-6]。长期施用化学肥料,会导致土壤板结,水体污染严重[7],不符合绿色、可持续发展的理念。

  • 作为土壤系统一部分的解磷微生物能够将难溶性磷转化为可溶性磷,进而提高土壤有效磷的含量,有利于植株对磷元素的吸收利用。解磷微生物的种类较多,包括细菌、真菌以及放线菌等[8],其中解磷细菌的数量最多,是解磷真菌的2~50倍[9]。目前关于解无机磷菌株的筛选多集中于农作物,如玉米、花生、大豆等[10-12],对于药用植物解无机磷细菌的筛选还未见报道。

  • 本研究分别从四川、云南、贵州中10个不同地点分别采集移栽品和野生品滇重楼,通过稀释根际土壤筛选解无机磷细菌,通过观察菌落,分析其生理生化,利用16S rDNA分子测序分离鉴定解无机磷菌株,为滇重楼微生物菌肥提供解无机磷的优良菌种,有助于提高滇重楼品质和产量。

  • 1 材料与方法

  • 1.1 试验材料

  • 采集样品根茎周边0~0.5cm附着土壤,除去木质、石块等杂质,混匀,放入无菌自封袋,4℃ 冰箱保存。滇重楼采集信息见表1。

  • 1.2 培养基

  • 无机磷固体培养基:琼脂15g,无机磷培养基17g,蒸馏水1000mL,1×105 Pa灭菌20min。

  • 种子液培养基:牛肉膏3g,NaCl5g,蛋白胨10g,蒸馏水1000mL,pH7.4~7.6,1×105 Pa灭菌20min。

  • 无机磷液体培养基:葡萄糖10g,(NH42SO4 0.5g,Ca3(PO42 5.0g,NaCl 0.3g,FeSO4 0.03g, KCl 0.3g,MgSO4 0.3g,MnSO4 0.03g,蒸馏水1000mL,pH 7.0~7.5,1×105 Pa灭菌20min。

  • 1.3 菌株分离与纯培养

  • 称取样品土壤1g,置于9mL无菌水中,振荡3h,制备成10-6~10-1 梯度的土壤稀释液。吸取100 μL稀释液,接种于已灭菌的培养基中,使用灭菌涂布棒涂抹均匀,37℃恒温培养3~4d后,挑取有解磷圈的菌株划线纯化细菌,重复3次。观察并记录培养基上菌株的菌落形态、大小及颜色,并进行革兰氏染色。取单菌落菌株与50%甘油1∶1混合,-20℃保种。

  • 表1 不同产地滇重楼样品来源

  • 1.4 解无机磷能力的测定

  • 将菌株接种到无机磷固体培养基上培养3~4d,测定解磷圈直径(D)和菌落直径(d),计算D/d值,用以表示菌株的解磷能力。

  • 使用种子液活化菌种48h后吸取500 μL种子液接种于无机磷液体培养基中,无菌水为空白对照,置于37℃、180r/min培养7d。7d后离心发酵液,取其上清液,采用钼锑钪比色法测定有效磷的浓度[13],用pH计测定上清液的pH值。

  • 1.5 菌株鉴定

  • 1.5.1 菌株生理生化特性测定

  • 参照《常见细菌系统鉴定手册》[14],将纯化的解无机磷菌株进行接触酶实验、淀粉水解实验、硝酸还原实验、吲哚实验、柠檬酸实验、精氨酸双水解实验、蔗糖发酵实验、葡萄糖发酵实验、M.R实验、尿素酶实验、明胶实验。

  • 1.5.2 细菌16S rDNA分子生物学鉴定

  • 参照天根细菌基因组DNA提取细菌总DNA,并进行浓度测定和纯度分析。利用16S rDNA扩增引物27F-1115R(27F:5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3, 1115R:5-AGGGTTGCGCTCGTTGC-3)[15],对菌株进行PCR扩增,PCR反应程序如下:95℃ 6min; 95℃ 30s,55℃ 30s,72℃ 1min,35个循环;72℃ 10min;4℃ 保存。PCR反应体系:2×PCR预混液10 μL、上游引物0.5 μL、下游引物0.5 μL、模板1 μL,补水至20 μL。使用1%琼脂糖凝胶纯化并回收PCR产物,检测后交由生工生物工程(上海)股份有限公司进行测序。利用MEGA 5.0进行系统发育树的建立:使用Clustal W多重序列比对所需序列,采用Neighbor-joining算法构建系统发育树。

  • 1.6 数据分析

  • 采用Excel 2016进行数据分析,MEGA 5.0进行进化树构建。利用SPSS 25.0和GraphPad Prism 8进行数据分析和作图,对不同菌株的可溶性指数、有效磷浓度、增磷量等进行单因素方差分析 (P<0.05)。

  • 2 结果与分析

  • 2.1 解无机磷菌株的菌落特征

  • 从不同生境的滇重楼根际土壤中分离纯化得到42株解无机磷菌株,其菌落形状多为圆形,中间扁平或凸起,颜色多为米白色或白色,大多表面湿润,菌落边缘大部分不整齐。

  • 2.2 解无机磷能力测定

  • 2.2.1 解无机磷能力的定性测定

  • 将筛选出的42株解无机磷菌株培养后,测量解磷圈直径(D)和菌落直径(d),比较可溶性指数D/d值,初步得到菌株的解磷能力。由表2可知,Y2-2菌株的D/d值最大,为3.65;其次是Y6-2、Y8-3、Y1-1(D/d值分别为3.31、2.86、 2.73)。结合显著性分析发现,不同菌株的解磷能力不同。

  • 表2 解无机磷菌的菌落直径、解磷圈直径以及两者的比值(n=3)

  • 注:小写字母不同表示差异达显著水平(P<0.05)。下同。

  • 2.2.2 解无机磷能力的定量测定

  • 通过钼锑钪比色法测定42株解无机磷菌株菌液中有效磷的含量。由表3和图1分析可知,菌株Z3-4解磷能力最强,发酵上清液中有效磷的含量为104.10mg/L、增磷量为38.55mg/L、解磷率为37.03%;其次为Y7-4、Y1-1、Y9-1。42株菌株发酵液的pH为3.93~5.70,均显著下降。其中, Z3-4菌株增磷量最高,但pH为4.31,不同解磷菌在溶磷过程中pH下降的程度不同,但与菌株溶磷量无明显的数量关系。

  • 表3 有效磷含量及菌液pH值(n=3)

  • 图1 42株解无机磷细菌的解磷率

  • 注:不同小写字母表示处理间差异达显著水平(P<0.05)。

  • 2.3 解无机磷细菌生理生化特征

  • 将42株解无机磷菌株进行革兰氏染色和生理生化实验测定。结果显示,42株解无机磷菌都是革兰氏阳性细菌,其中接触酶均为阳性,吲哚反应均为阴性;其淀粉水解、硝酸还原、柠檬酸、精氨酸双水解、蔗糖发酵、葡萄糖发酵、M.R、尿素酶以及明胶反应均呈现不同结果。

  • 表4 解无机磷菌株的理化特性

  • 续表

  • 注:+ 表示阳性反应,− 表示阴性反应。G+ 为革兰氏阳性。

  • 2.4 16S rDNA测定与系统发育树构建

  • 结合形态观察和淀粉水解、葡萄糖发酵及明胶反应等生理生化实验,进行16S rDNA序列分析。结果显示,19株菌株均归属于芽孢杆菌属,初步鉴定菌株Y1-2、Y4-1、Y4-2和Z7-4归属于苏云金芽孢杆菌(Bacillus thuringiensis),菌株Y1-1、Y5-1、Z8-1归属于蜡状芽孢杆菌(Bacillus cereus),菌株Y2-3归属于惠州芽孢杆菌(Bacillushuizhouensis),菌株Y8-3归属于安全芽孢杆菌 (Bacillus safensis),菌株Y6-1、Z10-1归属于短小芽孢杆菌(Bacillus pumil),菌株Y8-1、Y9-1、 Z1-1、Z3-4、Z6-1、Z7-1归属于阿氏芽孢杆菌 (Bacillus aryabhattai),其中阿氏芽孢杆菌(6株解无机磷菌)是优势菌种,其次是苏云金芽孢杆菌 (4株解无机磷菌)。

  • 图2 部分解无机磷菌的16S rDNA系统发育树

  • 注:树枝上的数字表示Bootstrap验证该树枝可信度的百分比。

  • 3 讨论

  • 通过解磷圈和钼锑钪比色法测定42株解无机磷菌株后发现,可溶性指数最高的菌株为Y2-2(D/d为3.65)、增磷量为4.28mg/L,而增磷量最高的菌株为Z3-4(D/d为2.18)、增磷量为38.55mg/L。因此,单纯从可溶性指数(解磷圈D与菌落直径d比值)并不能直接判断解磷能力,需要结合培养基中增磷量来预测。

  • 解无机磷细菌可与铁、铝、钙、镁等离子结合,使难溶性磷酸盐溶解释放磷元素[16]。而分泌有机酸是溶磷微生物溶磷的主要途径之一,有机酸能够降低pH[17-18]。发酵上清液的pH均比种子液pH低,推测解无机磷菌在解磷的过程中与培养基中的Ca3(PO42 反应,产生了酸性物质,从而引起pH的下降,但是詹寿发等[19]认为培养介质的pH下降不是溶磷的必要条件。不同解磷菌的解磷能力不同,导致pH下降的程度存在明显差异,表明培养基质pH的下降与解磷量不呈线性关系[20]

  • 解无机磷菌的种类较多,目前研究较多的主要有芽孢杆菌属(Bacillus)、假单孢菌属(Pseudomonas)、节杆菌属(Arthrobacter)、色杆菌属(Chromobacterium)以及分枝杆菌属(Mycobacterium),主要应用解磷巨大芽孢杆菌生产溶磷菌肥[21-22]。不同土壤中解磷菌的数量和种群特征存在较大差异,且根际环境适宜解磷微生物生长,表现出强烈的根际效应[23]。本研究从云南、贵州以及四川中10个不同地区采集的滇重楼根际土壤中筛选出42株解无机磷菌,经鉴定菌株均属于芽孢杆菌属,其中阿氏芽孢杆菌为优势菌种。下一步研究将解磷效果最好的菌株Z3-4回接到滇重楼根际土壤并探究解无机磷菌的解磷机制,对开发生物菌肥具有重要的参考意义。

  • 4 结论

  • 将20份不同生境滇重楼根际土壤样本分离纯化,获得42株解无机磷菌,通过解磷能力的定性和定量测定,筛选出解无机磷能力较强的菌株有菌株Y1-1、Y6-1、Y7-1、Y8-3和Z3-4,其中菌株Z3-4的解无机磷能力最强,其发酵液中的有效磷含量为104.10mg/L,增磷量达到38.55mg/L。结合菌株Z3-4的菌落形态、生理生化特性、16S rDNA测序结果,初步鉴定菌株Z3-4为阿氏芽孢杆菌。

  • 参考文献

    • [1] 李金龙,熊俊芬,张海涛,等.氮、磷、钾对滇重楼产量及皂苷含量的影响[J].云南农业大学学报(自然科学版),2016,31(5):895-901.

    • [2] 杨永红,戴丽君,何昆鸿,等.土壤营养与人工栽培滇重楼品质相关性评价[J].中药材,2012,35(10):1557-1561.

    • [3] Khan M S,Zaidi A,Wani P A.Role of phosphate solubilizing microorganisms in sustainable agriculture:a review[J]. Agronomy for Sustainable Development,2007,27(1):29-43.

    • [4] Weber O,Delince J,Duan Y.Trade and finance as crosscutting issues in the global phosphate and fertilizer market[M]. Berlin:Springer,2014.275-299.

    • [5] Ziadi N,Whalen J K,Messiga A J,et al.Assessment and modeling of soil available phosphorus in sustainable cropping systems[J].Agronomy,2013,122:85-126.

    • [6] 滕泽栋,李敏,朱静,等.解磷微生物对土壤磷资源利用影响的研究进展[J].土壤通报,2017,48(1):229-235.

    • [7] 魏自民,王世平,席北斗,等.富磷垃圾肥对大豆营养及产量、品质的影响[J].植物营养与肥料学报,2006,12(2):282-284.

    • [8] 庄馥璐,柴小粉,高蓓蓓,等.苹果根际解磷菌的分离筛选及解磷能力[J].中国农业大学学报,2020,25(7):69-79.

    • [9] 秦利均,杨永柱,杨星勇.土壤溶磷微生物溶磷、解磷机制研究进展[J].生命科学研究,2019,23(1):59-64.

    • [10] 朱德旋,杜春梅,董锡文,等.一株寒地高效解无机磷细菌的分离鉴定及拮抗作用[J].微生物学报,2020,60(8):1672-1682.

    • [11] 刘文干,曹慧,樊建波,等.一株红壤花生根际溶磷真菌的分离、鉴定及溶磷能力的研究[J].土壤学报,2012,49(5):988-995.

    • [12] 邵锴,邱业先,徐婧.高效溶磷菌的筛选、鉴定及其溶磷特性[J].江苏农业科学,2017,45(8):253-257.

    • [13] 王光华,周克琴,金剑,等.不同碳源对三种溶磷真菌溶解磷矿粉能力的影响[J].生态学杂志,2004(2):32-36.

    • [14] 东秀珠,蔡妙.常见细菌系统鉴定手册[M].北京:科学出版社,2001.374-390.

    • [15] Konda S G,Sobanbabu K G,Sabarinathan V K,et al.Evaluation of phyllosphere antagonistic bacteria on the management of Fusarium ear rot of maize caused by Fusarium verticillioides[J]. Journal of Biological Control,2018,32(4):257-263.

    • [16] Liu Z G,Li Y C,Zhang S A,et al.Characterization of phosphatesolubilizing bacteria isolated from calcareous soils[J].Applied Soil Ecology,2015,96:217-224.

    • [17] 李海云,姚拓,张榕,等.红三叶根际溶磷菌株分泌有机酸与溶磷能力的相关性研究[J].草业学报,2018,27(12):113-121.

    • [18] 张英,芦光新,谢永丽,等.溶磷菌分泌有机酸与溶磷能力相关性研究[J].草地学报,2015,23(5):1033-1038.

    • [19] 詹寿发,卢丹妮,毛花英,等.2 株溶磷、解钾与产IAA的内生真菌菌株的筛选、鉴定及促生作用研究[J].中国土壤与肥料,2017(3):142-151.

    • [20] Chen G C,He Z L,Wang Y J.Impact of pH on microbial biomass carbon and microbial biomass phosphorus in red soils [J].Pedosphere,2004,14(1):9-15.

    • [21] 宫安东,朱梓钰,路亚南,等.吡咯伯克霍尔德菌 WY6-5 的溶磷、抑菌与促玉米生长作用研究[J].中国农业科学,2019,52(9):1574-1586.

    • [22] 孟祥坤,于新,朱超,等.解磷微生物研究与应用进展 [J].华北农学报,2018,33(S1):208-214.

    • [23] Vazquez P,Holguin G,Puente M.E,et al.Phosphatesolubilizing microorganisms associated with the rhizosphere of mangroves in a semiarid coastal lagoon[J].Biology & Fertility of Soils,2000,30(5-6):460-468.

  • 参考文献

    • [1] 李金龙,熊俊芬,张海涛,等.氮、磷、钾对滇重楼产量及皂苷含量的影响[J].云南农业大学学报(自然科学版),2016,31(5):895-901.

    • [2] 杨永红,戴丽君,何昆鸿,等.土壤营养与人工栽培滇重楼品质相关性评价[J].中药材,2012,35(10):1557-1561.

    • [3] Khan M S,Zaidi A,Wani P A.Role of phosphate solubilizing microorganisms in sustainable agriculture:a review[J]. Agronomy for Sustainable Development,2007,27(1):29-43.

    • [4] Weber O,Delince J,Duan Y.Trade and finance as crosscutting issues in the global phosphate and fertilizer market[M]. Berlin:Springer,2014.275-299.

    • [5] Ziadi N,Whalen J K,Messiga A J,et al.Assessment and modeling of soil available phosphorus in sustainable cropping systems[J].Agronomy,2013,122:85-126.

    • [6] 滕泽栋,李敏,朱静,等.解磷微生物对土壤磷资源利用影响的研究进展[J].土壤通报,2017,48(1):229-235.

    • [7] 魏自民,王世平,席北斗,等.富磷垃圾肥对大豆营养及产量、品质的影响[J].植物营养与肥料学报,2006,12(2):282-284.

    • [8] 庄馥璐,柴小粉,高蓓蓓,等.苹果根际解磷菌的分离筛选及解磷能力[J].中国农业大学学报,2020,25(7):69-79.

    • [9] 秦利均,杨永柱,杨星勇.土壤溶磷微生物溶磷、解磷机制研究进展[J].生命科学研究,2019,23(1):59-64.

    • [10] 朱德旋,杜春梅,董锡文,等.一株寒地高效解无机磷细菌的分离鉴定及拮抗作用[J].微生物学报,2020,60(8):1672-1682.

    • [11] 刘文干,曹慧,樊建波,等.一株红壤花生根际溶磷真菌的分离、鉴定及溶磷能力的研究[J].土壤学报,2012,49(5):988-995.

    • [12] 邵锴,邱业先,徐婧.高效溶磷菌的筛选、鉴定及其溶磷特性[J].江苏农业科学,2017,45(8):253-257.

    • [13] 王光华,周克琴,金剑,等.不同碳源对三种溶磷真菌溶解磷矿粉能力的影响[J].生态学杂志,2004(2):32-36.

    • [14] 东秀珠,蔡妙.常见细菌系统鉴定手册[M].北京:科学出版社,2001.374-390.

    • [15] Konda S G,Sobanbabu K G,Sabarinathan V K,et al.Evaluation of phyllosphere antagonistic bacteria on the management of Fusarium ear rot of maize caused by Fusarium verticillioides[J]. Journal of Biological Control,2018,32(4):257-263.

    • [16] Liu Z G,Li Y C,Zhang S A,et al.Characterization of phosphatesolubilizing bacteria isolated from calcareous soils[J].Applied Soil Ecology,2015,96:217-224.

    • [17] 李海云,姚拓,张榕,等.红三叶根际溶磷菌株分泌有机酸与溶磷能力的相关性研究[J].草业学报,2018,27(12):113-121.

    • [18] 张英,芦光新,谢永丽,等.溶磷菌分泌有机酸与溶磷能力相关性研究[J].草地学报,2015,23(5):1033-1038.

    • [19] 詹寿发,卢丹妮,毛花英,等.2 株溶磷、解钾与产IAA的内生真菌菌株的筛选、鉴定及促生作用研究[J].中国土壤与肥料,2017(3):142-151.

    • [20] Chen G C,He Z L,Wang Y J.Impact of pH on microbial biomass carbon and microbial biomass phosphorus in red soils [J].Pedosphere,2004,14(1):9-15.

    • [21] 宫安东,朱梓钰,路亚南,等.吡咯伯克霍尔德菌 WY6-5 的溶磷、抑菌与促玉米生长作用研究[J].中国农业科学,2019,52(9):1574-1586.

    • [22] 孟祥坤,于新,朱超,等.解磷微生物研究与应用进展 [J].华北农学报,2018,33(S1):208-214.

    • [23] Vazquez P,Holguin G,Puente M.E,et al.Phosphatesolubilizing microorganisms associated with the rhizosphere of mangroves in a semiarid coastal lagoon[J].Biology & Fertility of Soils,2000,30(5-6):460-468.

  • 《中国土壤与肥料》招聘启事
    关闭